
图1:ATCC中BEAS-2B的细胞形态Beas-2B细胞从一位非癌个体的正常人支气管上皮病理切片分离,经过腺病毒12-SV40杂交病毒感染并筛选克隆建成永生
哔哩哔哩 2023-03-24 15:55:00
Beas-2B细胞从一位非癌个体的正常人支气管上皮病理切片分离, 经过腺病毒12-SV40杂交病毒感染并筛选克隆建成永生化细胞系 。BEAS-2B细胞保留了对血清反应进行鳞状分化的能力,并用于筛选诱导或影响分化及致癌的化学或生物制剂。PS:细胞角蛋白及SV40抗原染色阳性。
本文为大家介绍BEAS-2B的培养条件及注意事项:
(资料图片)
【生长特性】 贴壁
【形态特征】上皮细胞样
【培养条件】 BEGM培养基
【传代比例】1:4传代(培养面积比),推荐初始密度为1500-3000细胞/CM2,在细胞完全汇合前传代,防止细胞鳞状分化。传代时应严格控制密度,最少不能低于60%,最高不超过80%。
【传代方式】胰酶(0.25%Typsin+0.53 MM EDTA+0.5%POLYVINYLPYRROLIDONE (PVP))消化2分钟
【换液频率】2~3天换液1次
【冻存液配方】89%BEGM +10%DMSO+1% PVP
使用无血清培养基BEGM培养,效期2个月。
消化条件:无钙、镁离子的PBS清洗细胞后,加1mL胰酶,胰酶润洗细胞表面3-4次后,吸走胰酶,放入37℃培养箱消化2分钟左右。(具体消化时间请在拿到细胞前2次传代时,及时观察,以实际情况为主。)
终止消化时,用1mL胰蛋白酶抑制剂(2.5mg/mL)终止,离心去上清,然后用3mL PBS再次清洗细胞,离心收集后,用新的培养基重悬后铺板。(消化过程中,不要拍瓶身,振荡可促使细胞聚团。)
注意:80%左右汇合度时传代,完全汇合会使细胞末端分化。
刚复苏要使用提前用包被液包被过的培养器皿(包被液配方:0.01mg/mL黏连蛋白、0.03mg/mL Ⅰ型胶原和0.01mg/mL BSA),以增加细胞贴附。培养器皿提前使用包被液处理,包被时间至少4小时,建议过夜。
包被液使用方法:加2-3mL到T25培养瓶(3-4mL到10cm培养皿),放无菌环境中,拧上盖子,自然风干。
复苏后的传代培养过程中可不做包被处理,细胞可正常贴壁。
用不含血清的培养基培养时,BEAS-2B细胞具有典型的呼吸上皮细胞多边形态;用含血清的培养基培养时,密度低时细胞形态会呈长梭型,但密度高一些以后形态会变短。
★ 通过比较有/无FBS培养的BEAS-2B的全基因组基因表达情况,发现部分生物途径发生了基因表达变化,主要包括致癌和能量代谢有关的途径。
★ 实验实时测量BEAS-2B的氧消耗和糖酵解,发现FBS培养的细胞总糖酵解能力增加了1.4倍,基础呼吸增加了1.9倍,产生ATP所消耗的氧气增加了2.0倍;与不使用FBS培养的BEAS-2B相比,最大呼吸量增加了2.8倍。
★ 43%的亚砷酸盐调节基因在mRNA水平上受到胎牛血清的调节。
★ 细胞毒性研究显示,暴露在5%的FBS中8周的BEAS-2B细胞对亚砷酸盐的细胞毒性的敏感性几乎是不接触FBS的BEAS-2B细胞的5倍。
★ 胎牛血清诱导的BEAS-2B的表型变化表明,在使用BEAS-2B作为砷毒性的实验模型时 ,应仔细考虑培养条件。
【参考文献】
[1] Zhao F , Klimecki W T . Culture conditions profoundly impact phenotype in BEAS‐2B, a human pulmonary epithelial model[J]. Journal of Applied Toxicology Jat, 2015, 35(8):945-951.
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[3] Tan H W, Liang Z, Yao Y, et al. Lasting DNA Damage and Aberrant DNA Repair Gene Expression Profile Are Associated with Post-Chronic Cadmium Exposure in Human Bronchial Epithelial Cells[J]. Cells, 2019, 8(8).
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DOI:10.1016/j.envint.2020.105755 (此文献Beas-2B细胞购自赛库生物)
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